Манзенюк И.Н., Ганина Е.А., Дорохин В.В., Калачев И.Я., Борзенков В.Н., Светоч Э.А. Государственный научный центр прикладной микробиологии, Московская обл., Оболенск
АНТИБИОТИКИ И ХИМИОТЕРАПИЯ, 1999-N6, стр. 21-26.
В начало...
Определены параметры инфекционной активности B.mallei и B.pseudomallei для различных видов животных. Изучены патоморфологические особенности протекания сапной и мелиоидозной инфекции у золотистых хомячков, мышей, морских свинок, крыс и обезьян. Показан протективный эффект туляремийной, противочумной и сальмонеллезной вакцин при экспериментальном сапе и мелиоидозе. Отмечен слабый перекрестный иммунный ответ между штаммами возбудителя сапа и мелиоидоза.Ключевые слова:
Сап и мелиоидоз - это тяжелые инфекционные заболевания людей и животных, в отношении которых не разработаны средства специфической профилактики [1-3]. Моделирование мелиоидозной и сапной инфекции на лабораторных животных во многом предопределяет успех разработки средств диагностики, профилактики и лечения этих заболеваний [2-4]. Патоморфологическое изучение дает необходимые знания для понимания патогенеза этих инфекционных заболеваний, а также обеспечивает оптимальный выбор вида лабораторного животного при проведении экспериментальных исследований.
По данным литературы известно, что человек умеренно восприимчив к возбудителю сапа
- Burkholderia mallei [1, 3]. Среди животных к нему чувствительны обезьяны, морские свинки и мыши линии СВА. Литературные источники, посвященные исследованию патоморфологии сапной инфекции у лабораторных животных, немногочисленны. Описательный характер материала, свойственный морфологическим исследованиям, затрудняет выделение особенностей протекания сапной и мелиоидозной инфекции у различных видов животных.
Целью нашей работы явилось изучение вирулентных свойств B.mallei и B.pseudomallei, сравнительный анализ основных особенностей пато- и иммуногенеза сапа и мелиоидоза, отбор на роль рабочей модели мелкого лабораторного животного, чей уровень чувствительности к инфекционному агенту, патогенез инфекционного процесса были бы близкими к таковым у человека, а также исследование возможности использования гетерологичных вакцин в неспецифической защите организма от мелиоидоза и сапа.
В работе использовали типичные по культуральным, морфологическим и биохимическим свойствам высоковирулентные штаммы B.pseudomallei С-141 и B.mallei Ц-5. Штаммы хранились в лиофилизированном состоянии при 4 њС в музее культур Государственного научного центра прикладной микробиологии.
Для воспроизведения сапной и мелиоидозной инфекции использовали золотистых хомячков, морских свинок, беспородных и линейных мышей (СВА, Balb/c), белых беспородных крыс и обезьян павианов гамадрилов. Заражение экспериментальных животных проводили подкожно и внутрибрюшинно одно- и двухсуточными агаровыми культурами возбудителей сапа и мелиоидоза соответственно.
Для единичного эксперимента использовали 5-6 доз с шагом от 0,5 до 1,0 lg и минимум по шесть мелких лабораторных животных на одну дозу. Наблюдение за животными осуществляли в течение 45 суток после заражения с ежедневным учетом числа погибших. Инфицированные обезьяны подвергались ежедневному термометрированию и клиническому осмотру. Патоморфологическому и бактериологическому исследованию подвергались как органы погибших, так и подвергнутых эвтаназии (после окончания срока наблюдения) животных.
В экспериментах по исследованию протективного действия гетерологичных живых вакцин использовали туляремийную (ЖТВ), противочумную (EV), сальмонеллезную на основе аттенуированного штамма Salmonella typhimurium (Salm) и туберкулезную (БЦЖ) вакцины. Иммунизирующие дозы ЖТВ и EV для морских свинок составили 107 микробных клеток, а для мышей - 25 и 107 микробных клеток соответственно. Титры антител на 30-е сутки после иммунизации у морских свинок составили для ЖТВ - 1/160, для EV - 1/320. Иммунизацию Salm и БЦЖ проводили подкожно в дозах 104 микробных клеток и 0,1 мг соответственно. В зависимости от вакцины использовали однократную, двукратную или трехкратную иммунизацию животных.
Заражение животных вирулентными штаммами B.pseudomallei С-141 или B.mallei Ц-5 осуществляли на 7-10-е сутки после последней вакцинации; при однократной вакцинации животных заражали на 30-е сутки.
Полученные данные обработаны при помощи прикладных программ по математической статистике на ПЭВМ, а также согласно рекомендациям [5]. Индекс защиты (ИЗ) рассчитывали как отношение LD50 иммунизированных (опытных) животных к LD50 неиммунизированных (контрольных) животных. На 45-е сутки после заражения выживших животных умерщвляли хлороформом и делали высевы из внутренних органов (легких, печени и селезенки) на плотную питательную среду на основе солянокислого гидролизата казеина. Результаты учитывали через 48 часов инкубации посевов при 37 њС.
При изучении уровня резистентности животных к сапной и мелиоидозной инфекциям использовали показатели, дающие представление о степени восприимчивости того или иного вида животного к возбудителю, безотносительно к исходу заболевания: характеризующие инфекционную чувствительность (ID50), способность вирулентного штамма вызывать смертельную инфекцию (LD50) и скорость генерализации инфекционного процесса - среднее время гибели (СВГ). Данные параметры отражают конституциональный иммунитет вида к инфекции. Результаты определения параметров инфекционной активности клеток B.mallei и B.pseudomallei на лабораторных животных приведены в табл. 1.
Таблица 1. Параметры инфекционной активности возбудителей мелиоидоза и сапа |
Вид животного |
Параметры |
B.pseudomallei |
B.mallei |
метод заражения |
метод заражения |
подкожный |
внутрибрюшинный |
подкожный |
внутрибрюшинный |
Беспородные белые мыши |
LD50, микр.кл. |
3,3x104 х:4,5 |
3,0x104 х:6,8 |
6,3x106 х:5,7 |
9,6x105 х:5,2 |
ID50, микр.кл. |
8,0x103 х:5,7 |
1,5x104 х:2,8 |
1,7x106 х:2,9 |
4,9x105 х:3,7 |
СВГ, сутки |
11,1 2,5 |
9,1 1,7 |
8,3 1,0 |
6,9 1,7 |
Мыши линии СВА |
LD50, микр.кл. |
2,0x103 х:6,0 |
5,8x102 х:5,6 |
2,8x105 х:2,2 |
1,2x105 х:3,3 |
ID50, микр.кл. |
1,5x103 х:7,3 |
1,7x102 х:4,7 |
2,9x104 х:2,3 |
2,9x104 х:5,6 |
СВГ, сутки |
10,3 2,5 |
10,1 2,0 |
11,2 2,0 |
8,3 1,7 |
Мыши линии Balb/c |
LD50, микр.кл. |
1,1x105 х:14,2 |
1,5x104 х:9,7 |
2,0x106 х:5,2 |
4,2x105 х:7,8 |
ID50, микр.кл. |
3,7x104 х:6,2 |
5,4x103 х:5,1 |
4,5x105 х:5,4 |
2,9x105 х:7,1 |
СВГ, сутки |
14,4 2,3 |
7,5 2,5 |
7,2 1,3 |
5,9 0,7 |
Золотистые хомячки |
LD50, микр.кл. |
3,6 х:1,3 |
9,5 х:1,2 |
2,4 х:1,2 |
2,1 х:1,4 |
ID50, микр.кл. |
3,6 х:1,3 |
9,5 х:1,2 |
2,4 х:1,2 |
2,1 х:1,4 |
СВГ, сутки |
7,2 1,2 |
7,4 1,9 |
4,6 0,3 |
7,2 1,6 |
Морские свинки |
LD50, микр.кл. |
4,6 х:1,4 |
5,5 х:2,4 |
2,5x104 х:4,8 |
1,6x103 х:4,1 |
ID50, микр.кл. |
4,6 х:1,4 |
5,5 х:2,4 |
4,5x103 х:5,3 |
2,2x102 х:4,1 |
СВГ, сутки |
9,7 1,5 |
7,9 1,8 |
14,7 1,0 |
12,4 1,4 |
Белые крысы |
LD50, микр.кл. |
1,1x106 х:8,4 |
4,4x104 х:1,5 |
>108 |
>1010 |
ID50, микр.кл. |
5,5x105 х:3,4 |
3,5x104 х:1,5 |
- |
- |
СВГ, сутки |
14,7 2,4 |
15,0 6,0 |
- |
12,0 |
Примечание. Приведены средние статистические данные по результатам нескольких экспериментов в зависимости от вида животных.
Патоморфологическое исследование органов животных, зараженных подкожно вирулентными штаммами B.mallei Ц-5 и B.pseudomallei С-141, в динамике развития инфекционного процесса позволило выявить особенности патогенеза сапа и мелиоидоза у золотистых хомячков, морских свинок, мышей линии СВА, обезьян и крыс, которые представлены в табл. 2.
Таблица 2. Критерии оценки животных в качестве модели сапной и мелиоидозной экспериментальных инфекций |
Животные |
Сап |
Мелиоидоз |
А |
Б |
В |
Г |
Д |
Е |
А |
Б |
В |
Г |
Д |
Е |
Хомячки |
- |
+ |
+ |
+ |
- |
- |
- |
+ |
++ |
+ |
- |
- |
Морские свинки |
+ |
- |
++ |
+ |
+ |
+ |
- |
+ |
++ |
+ |
- |
- |
Мыши СВА |
+ |
+ |
|
+ |
+ |
++ |
- |
+ |
+ |
+ |
- |
+ |
Kрысы |
- |
- |
- |
- |
- |
++ |
+ |
+ |
+ |
- |
+ |
++ |
Обезьяны |
+ |
- |
++ |
- |
+ |
+ |
- |
+ |
++ |
+ |
+ |
|
Примечание: А - развитие хронической формы инфекции, Б - ранняя генерализация инфекционного процесса, В - интоксикация, Г - мелкоочаговый гнойно-некротический тип поражения, Д - формирование абсцессов, Е - иммунный ответ.
Далее...
Написать комментарий
|